Introducción

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1. Principales tipos de muestras microbiológicas

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2. Criterios de calidad y causa de rechazo de muestras

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3. Métodos y medios de transporte según el microorganismo sospechado

4. Procesamiento inicial: tinciones, siembra, técnicas rápidas

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5. Automatización de la siembra y procesamiento de muestras

6. Registro, trazabilidad y gestión de muestras

7. Conclusiones

8. Bibliografía

Introducción

1. Técnicas de tinción: Gram, Ziehl-Neelsen y tinciones especiales

1.1. Tinción de Gram

1.2. Tinción de Ziehl-Neelsen

1.3. Tinciones especiales

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2. Cultivos: tipos de medios, condiciones de incubación y crecimiento diferencial

2.1. Tipos de medios de cultivo

2.2. Condiciones de incubación

2.3. Crecimiento diferencial

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3. Identificación bacteriana: pruebas bioquímicas y sistemas automatizados

3.1. Pruebas bioquímicas convencionales

4. Pruebas de sensibilidad: difusión, microdilución y sistemas automatizados

4.1. Método de difusión en disco (Kirby-Bauer)

4.2. Método de gradiente de difusión en tira

4.3. Método de microdilución

4.4. Sistemas automatizados de sensibilidad

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5. Interpretación del antibiograma

5.1. Componentes del antibiograma

5.2. Puntos de corte clínicos frente a epidemiológicos

6. Microorganismos multirresistentes y su notificación

6.1. Definiciones operativas

6.2. Mecanismos relevantes de resistencia

6.3. Implicaciones para el laboratorio

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7. Conclusiones

8. Bibliografía

Introducción

1. Métodos de laboratorio para el diagnóstico de infecciones víricas

1.1 Métodos directos

1.1.1 Técnicas de detección de antígenos

1.1.2 Técnicas de biología molecular

1.1.3 Cultivo viral

1.2. Métodos indirectos: serología

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2. Virus respiratorios: importancia, métodos diagnósticos, coinfecciones, interpretación en grupos especiales (pediatría y geriatría)

2.1. Métodos de diagnóstico de virus respiratorios

2.2. ¿Cómo identificar coinfecciones?

2.3. Grupos de pacientes con consideraciones especiales: niños, ancianos e inmunodeprimidos

3. Virus hepatótropos: importancia, métodos diagnósticos y seguimiento terapéutico

3.1. Importancia del diagnóstico de virus hepatótropos

3.2. Métodos de diagnóstico de virus hepatótropos

3.3. Manejo clínico y seguimiento terapéutico

4. Virus de transmisión sexual: virus del herpes simple, virus del papiloma humano, virus de la inmunodeficiencia humana

4.1. Importancia del diagnóstico de virus de transmisión sexual

4.2. Métodos de diagnóstico

4.3. Manejo y prevención de los virus de transmisión sexual

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5. Diagnóstico y monitorización de infecciones virales en pacientes inmunodeprimidos

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6. Gestión de muestras y tiempos de respuesta

6.1. Tipos de muestra según la localización del virus

6.2. Requisitos de manejo

6.3. Tiempos de respuesta habituales

7. Conclusiones

8. Bibliografía

1. ASPECTOS ANALÍTICOS DE LA TOMA Y TRANSPORTE DE MUESTRAS

2. REVISIÓN DE HONGOS PATÓGENOS: DERMATOFITOS, LEVADURAS, HONGOS FILAMENTOSOS, DIMÓRFICOS Y Pneumocystis jirovecii

3. TINCIÓN Y CULTIVO MICOLÓGICO: PRINCIPALES MÉTODOS PARA EL DIAGNÓSTICO DE HONGOS PATÓGENOS

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4. DETECCIÓN DE ANTÍGENOS GALACTOMANANO Y (1-3)--D-GLUCANO. INTERPRETACIÓN CLÍNICA

5. IDENTIFICACIÓN DE LEVADURAS POR SISTEMAS AUTOMATIZADOS, ESPECTROMETRÍA DE MASAS Y BIOLOGÍA MOLECULAR

6. ANTIFUNGIGRAMA: UTILIDAD, LIMITACIONES Y CRITERIOS DE INTERPRETACIÓN

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7. DETECCIÓN Y MANEJO DE ESPECIES RESISTENTES: Candida auris Y Candida parapsilosis

Evalúa tus conocimientos

8. DIAGNÓSTICO EN PACIENTES INMUNODEPRIMIDOS

9. CONCLUSIONES

10. BIBLIOGRAFÍA

Introducción

1. Diagnóstico de las parasitosis intestinales y urogenitales

1.1. Consideraciones para la recogida y el procesamiento de muestras

1.2. Técnicas de análisis coproparasitológico

1.3. Diagnóstico de laboratorio de los principales parásitos digestivos y urogenitales

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2. Diagnóstico de parásitos sanguíneos y tisulares

2.1. Consideraciones para la recogida y el procesamiento de muestras

2.2. Técnicas básicas de diagnóstico directo

2.3. Diagnóstico de laboratorio de los principales parásitos sanguíneos y tisulares

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3. Conclusiones

4. Bibliografía

Introducción

1. Mecanismos de resistencia bacteriana más relevantes

2. Técnicas fenotípicas, moleculares, point-of-care y pruebas rápidas

2.1. Técnicas fenotípicas

2.2. Técnicas moleculares

2.3. Técnicas point-of-care

2.4. Pruebas rápidas

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3. Informes microbiológicos clínicamente orientados: cuándo escalar o desescalar antibióticos

3.1. Gestión del antibiograma

3.2. Escalado antibiótico: cuándo es necesario

3.3. Desescalado antibiótico: optimización y seguridad

3.4. Rol del facultativo del laboratorio

4. Antibiograma acumulado: concepto, utilidad y limitaciones

4.1. Utilidad clínica

4.2. Limitaciones

5. Papel del laboratorio en programas de optimización del uso de antibióticos

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6. Caso clínico

7. Conclusiones

8. Bibliografía

Introducción

1. Paneles sindrómicos

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2. Automatización y digitalización en microbiología

2.1. Automatización en serología infecciosa

2.2. Limitaciones en otras áreas microbiológicas

2.3. Automatización en biología molecular y diagnóstico avanzado

2.4. Retos en áreas clásicas basadas en cultivo y microscopía

2.5. Digitalización en microbiología

2.6. Revolución tecnológica con inteligencia artificial

2.7. Perspectivas futuras

Evalúa tus conocimientos

3. Secuenciación de nueva generación

3.1. Tecnologías de secuenciación: segunda y tercera generación

3.2. Estrategias principales de secuenciación

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3.3. Aplicaciones actuales en microbiología clínica

3.4. Desafíos para la implementación clínica de la secuenciación de nueva generación

3.5. Estado actual y perspectivas del diagnóstico clínico con secuenciación de nueva generación

4. Metagenómica

4.1. Contextos de aplicación de la metagenómica

5. Microbioma

5.1. Importancia clínica del microbioma

6. Formación continua, ética y comunicación del riesgo microbiológico

7. Conclusiones

8. Bibliografía

Evaluación final

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